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小鼠的趋化蛋白12ELISA试剂盒Mouse CXCL12 ELISA KIT
货号  :HM-031
价格:¥3800.00
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小鼠的趋化蛋白12定量分析酶联免疫检测试剂盒

 

本试剂盒仅供科研使用。用于体外定量检测小鼠血清、血浆或细胞培养上清液中的CXCL12浓度  。使用前请仔细阅读说明书并检查试剂组分是否完整 。如有产品包装破损或质量投拆  ,请在收到货一个月之内联系尊龙凯时人生就是搏。

 

CXCL12简介:

CXCL12    ,也叫SDF-1  ,属于CXC趋化因子家庭。由位于10号染色体的的CXCL12基因编码 。有两种亚型SDF-1α和SDF-1β, SDF-1α是一个89个氨基酸的多肽,SDF-1β与SDF-1α相比,序列相同   ,只在C末端多了4个残基。SDF-1α是一个高度保守的蛋白,在人和小鼠间有99%的同源性   。

SDF-1由骨髓基质细胞表达   ,在包括心   、肝、脑  、肾 、骨骼肌和淋巴器官等许多器官都存在。

SDF-1作为一个高效的淋巴细胞趋化因子                     ,能直接诱导和活化淋巴细胞在LPS、TNF和细胞因子等的免疫刺激作出应答,SDF-1作为单核细胞有效的化学诱导剂 ,能刺激B细胞增殖  。SDF-1似乎在淋巴细胞和造血细胞的运输和归巢中有一定的作用    。SDF-1已证明在肿瘤发生的过程中有重要的作用,包括刺激肿瘤细胞的生长  、恶化 、促进肿瘤血管增生、肿瘤转移等生理过程均有刺激作用    。

 

检测原理:

本试剂盒采用双抗体夹心ELISA法检测样本中CXCL12的浓度。CXCL12捕获抗体已预包被于酶标板上    ,当加入标本或参考品时,其中的CXCL12会与捕获抗体结合 ,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去  。当加入生物素化的抗人CXCL12抗体后 ,抗人CXCL12抗体与CXCL12接合  ,形成夹心的免疫复合物,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去 。随后加入辣根过氧化物酶标记的亲合素    。生物素与亲合素特异性结合,亲合素连接的酶就会与夹心的免疫复合物连接起来  ;其它游离的成分通过洗涤的过程被除去  。最后加入显色剂,若样本中存在CXCL12将会形成免疫复合物 ,辣根过氧化物酶会催化无色的显色剂氧化成蓝色物质  ,在加入终止液后呈黄色 。通过酶标仪检测,读其450nm处的OD值,CXCL12浓度与OD450值之间呈正比,通过参考品绘制标准曲线 ,对照未知样本中OD值 ,即可算出标本中CXCL12浓度  。

 

小鼠CXCL12定量分析酶联免疫检测试剂盒组成:

组分

规格(96T/48T)

小鼠CXCL12预包被板

12条/6

样本分析缓冲液

5ml/3ml

5×标准品稀释液

10ml/5ml

小鼠CXCL12标准品

4支/2支(冻干)

小鼠CXCL12生物素化抗体

10ml/5ml

亲和素连接的HRP酶

10ml/5ml

浓缩洗涤液 20×

30ml/15ml

TMB底物

10ml/5 ml

中止液

5ml/3 ml

封板胶纸

3/2

说明书

1

 

标本收集:

1.标本的收集请按下列流程进行操作;

A.细胞上清标本离心去除悬浮物后即可  ;

B.血清标本应是自然凝固后 ,取上清,避免在冰箱中凝固血液;

C.血浆标本,推荐用EDTA的方法收集若待测样本不能及时检测,

D.标本收集后请分装,冻存于-20℃      ,避免反复冻融。

2.血清标本不应添加任何防腐剂或抗凝剂    ;

3.标本应清澈透明  ,检测前样本中如有悬浮物应通过离心去除  。

4.请勿使用溶血,高血脂或污染的标本检测 ,否则结果将不准确。

注 :小鼠血清或血浆样本请用样本分析缓冲液做倍比稀释后再检测 。

 

注意事项:

1.试剂盒请保存在28℃。

2.浓缩洗涤液因在低温下可能有结晶 ,请水浴加热使结晶完全溶解后再配制工作液。

3.标准品复溶加样后,剩余部份请丢弃。

4.底物请勿接触氧化剂和金属 。

5.加样时 ,请及时更换枪头 ,避免交叉污染 。

6.严禁混用不同批号的试剂盒组份。

7.充分混匀对保证反应结果的准性很重要,在加液后请轻轻叩击边缘以保证混匀   。

8.室温反应 ,请严格控制在25~28℃ 。

9.洗涤过程是至关重要的 ,洗涤不充分会使精确度下降并导致结果误差较大      。

10.试验中标准品和样本检测时建议作双复孔 。

11.加样过程中避免气泡的产生   。

12.血清和血浆标本的检测时 ,检测抗体的孵育时间应适当延长  。

 

检测前准备工作: 

1.试剂盒自冰箱中取出后应置室温(25~28℃)平衡20分钟;每次检测后剩余试剂请及时于2~8℃保存 。

2.将浓缩洗涤液用双蒸水或去离子水稀释(1份加19份水)  。

3.如有5X标准品稀释液,请按所需量用双蒸水或去离子水稀释(1份加4水) 。

4.标准品: 按标签复溶体积加入1X标准品稀释液复溶使使CXCL12终浓度达到3000pg/ml,室温反应,请严格控制在25~28℃,静置10~15分钟后轻轻混悬(建议抽吸几次)待彻底溶解   ,用标准品稀释液倍比梯度稀释后依次加入检测孔中。(标准曲线取七个点 ,最高浓度为3000 pg/ml,标准品稀释液直接加入作为0浓度.)

图片2.png 

洗涤方法:

自动洗板机或人工洗板     :每孔洗涤液为300ul ,注入与吸出间隔15-30秒  。洗板5次。最后一次洗板完成后将板倒扣着在厚吸水纸上用力拍干。

 

实验过程需自备的材料:

1.不同规格的加样枪及相应的枪头;   

2.酶标仪  ;

3.自动洗板机    ;                     

4.去离子水或双蒸水     ;

 

操作步骤:

1.通过计算并确定一次性实验所需的板条数,取出所需板条放置在框架内 ,暂时用不到板条请放回铝箔袋密封     ,保存于4℃。

2.建议设置本底较正孔,即空白孔,设置方法为该孔只加TMB显色液和中止液 。每次实验均需做标准品对照并画出标准曲线。

3.分别将标本或不同浓度标准品(100ul/孔)加入相应孔中  ,用封板胶纸封住反应孔 ,室温(25~28℃)孵育120分钟 。如果是血清血浆样本,不同样本稀释比例不一样,一般范围在1~10倍,如无明确范围 ,建议从2倍开始,加样稀释说明如下 :每孔先加样本分析缓冲液50ul,再加用1×标准品稀释液稀释1倍后的样本,加样量为50ul。

4.洗板5次  ,且最后一次置厚吸水纸上拍干 。

5.加入生物素化抗体工作液(100ul/)          。用封板胶纸封住反应孔  ,室温(25~28℃)孵育60分钟。   

6.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干  。

7.加入亲和素连接的HRP酶工作液(100ul/) 。用封板胶纸封住反应孔,避光室温(25~28℃)孵育20分钟。

8.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

9.加入显色剂TMB100ul/孔,避光室温(25~28℃)孵育20分钟。

10.加入终止液50ul/孔,混匀后即刻测量OD450值 。

 

结果判断:

1.复孔的值在20%的差异范围内结果才有效 ,复孔的值平均后可作为测量值。

2.每个标准品或标本的OD值应减去本底校正孔的OD值   。

3.手工绘制标准曲线   。以标准品浓度作横坐标,OD值作纵坐标,以平滑线连接各标准品的坐标点。通过标本的OD值可在标准曲线上查出其浓度 。

4.若标本OD值高于标准曲线上限 ,应适当稀释后重测  ,计算浓度时应乘以稀释倍数。

典型数值和参考曲线

浓度pg/ml

典型OD1

典型OD2

OD平均值

0

0.1224

0.1281

0.12525

93.75

0.2942

0.3024

0.2983

187.5

0.4553

0.4296

0.44245

375

0.7754

0.7318

0.7536

750

1.018

1.0373

1.02765

1500

1.5371

1.5453

1.5412

3000

2.1963

1.9857

2.091

小鼠CXCL12 参考标准曲线

图片1.png 

注意   :本图仅供参考   ,应以同次试验标准品所绘标准曲线计算标本含量 。

 

灵敏度,特异性和重复性:

1.灵敏度 :多次重复结果表明 ,最小检出量为31.6pg/ml   。

2.特异性:与人和鼠的IP-10/CRG-2均无交叉反应性   ,能识别小鼠的SDF-1α  。

3.重复性:板内,板间变异系数均<10%.

 

参考文献:

1. Abi-Younes, S. (2000) Circ. Res. 86(2):131.

2. Sapede, D. et al., 2005, Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 102: 1714-1718.

3. Delgado, M.B. et al., 2001, Eur. J. Immunol. 31: 699-707.

4. Bluel, C. et al. (1996) J. Exp. Med. 184:1101.

5. Crump, M.P. et al. (1997) EMBO J. 16:6996.

6. Bbalabanian, K. et al., 2005, J. Biol. Chem. 280: 35760-35766.

7. Vila-Coro, A.J. et al. (1999) FASEB J. 13:1699.

8. Oberlin, E. et al. (1996) Nature 382:833.

9. Orimo, A. et al., 2005, Cell. 121: 335-348.

10. Kryczek, I. et al., 2007, Am. J. Physiol. Cell. Physiol. 292: C987-995.


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