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小鼠白细胞介素12P70ELISA试剂盒Mouse IL-12 p70 ELISA KIT
货号 :HM-07
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小鼠白细胞介素12P70定量分析酶联免疫检测试剂盒

 

本试剂盒仅供科研使用。用于体外定量检测小鼠血清、血浆或细胞培养上清液中的IL-12P70浓度。使用前请仔细阅读说明书并检查试剂组分是否完整。如有产品包装破损或质量投拆 ,请在收到货一个月之内联系尊龙凯时人生就是搏。

 

IL-12P70简介:

IL-12P70称为自然杀伤细胞刺激因子(NKSF)或细胞毒性淋巴细胞成熟因子(CLMF)主要是由受激发的巨噬细胞产生的多效性细胞因子 。IL-12P70还可由树突状细胞 、单核细胞、郎格罕细胞 、嗜中性粒细胞和角化细胞等产生 。

具生物学活性的小鼠IL-12P70是二硫键连接一个40 kDa (p40)35 kDa (p35)的亚基的异型复合体 ,即70 kDa (p70)。成熟的小鼠40 kDa (p40)亚基有13个半胱氨酸和5个可糖基化的N末端的N313个氨基酸的蛋白。无论是p40 还是 p35亚基都不具有IL-12的生物学活性  ,但由两个p40亚基构成的同型复合物可与IL-12P70受体结合,从而充当IL-12P70的拮抗剂  。虽然小鼠的IL-12P70对人和小鼠细胞都有活性 ,但人的IL-12P70只对人细胞有生物活性 。

IL-12P70T淋巴细胞和自然杀伤(NK)细胞有多种作用    ,这些作用包括在T细胞和NK细胞中诱导干扰素和肿瘤坏死因子的生产,提高T细胞和NK细胞毒素的活性的以及刺激T细胞和NK细胞的分化 。IL-12P70IFN-γ的强烈诱导物 ,但诱导出的IFN-γ反过刺激吞噬细胞产生IL-12P70和其它促炎性因子  ,这样 ,由IL-12P70诱导的IFN-γ就在感染时促炎症反应中反馈放大的机理中扮演重要的角色   。IL-12P70 在通过提高Th1细胞介导的免疫反应中有重要作用 。

 

检测原理:

本试剂盒采用双抗体夹心ELISA法检测样本中小鼠IL-12P70的浓度。小鼠IL-12P70捕获抗体已预包被于酶标板上 ,当加入标本或参考品时,其中的小鼠IL-12P70会与捕获抗体结合   ,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去  。当加入生物素化的抗小鼠IL-12P70抗体后,抗小鼠IL-12P70抗体与小鼠IL-12P70接合  ,形成夹心的免疫复合物 ,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去   。随后加入辣根过氧化物酶标记的亲合素 。生物素与亲合素特异性结合    ,亲合素连接的酶就会与夹心的免疫复合物连接起来;其它游离的成分通过洗涤的过程被除去  。最后加入显色剂 ,若样本中存在IL-12P70将会形成免疫复合物 ,辣根过氧化物酶会催化无色的显色剂氧化成蓝色物质,在加入终止液后呈黄色  。通过酶标仪检测 ,读其450nm处的OD值,小鼠IL-12P70浓度与OD450值之间呈正比     ,通过参考品绘制标准曲线,对照未知样本中OD值,即可算出标本中IL-12P70浓度。

 

小鼠IL-12P70定量分析酶联免疫检测试剂盒组成:

组分

规格(96T/48T)

小鼠IL-12P70预包被板

12条/6

样本分析缓冲液

5ml/3ml

标准品稀释液

10ml/5ml

小鼠IL-12P70标准品

2支/1支(冻干)*

小鼠IL-12P70生物素化抗体

10ml/5ml

亲和素连接的HRP酶

10ml/5ml

浓缩洗涤液 20×

30ml/15ml

TMB底物

10ml/5ml

中止液

5ml/3ml

封板胶纸

3/2

说明书

1

标本收集:

1.标本的收集请按下列流程进行操作  ;

A.细胞上清标本离心去除悬浮物后即可;

B.血清标本应是自然凝固后,取上清 ,避免在冰箱中凝固血液  ;

C.血浆标本     ,推荐用EDTA的方法收集    ;

D.若待测样本不能及时检测,标本收集后请分装,冻存于-20℃,避免反复冻融  。

2.血清标本不应添加任何防腐剂或抗凝剂  ;

3.标本应清澈透明,检测前样本中如有悬浮物应通过离心去除。

4.请勿使用溶血,高血脂或污染的标本检测,否则结果将不准确  。

注 :小鼠血清或血浆样本请用样本分析缓冲液做倍比稀释后再检测。

 

注意事项:

1.试剂盒请保存在28℃。

2.浓缩洗涤液因在低温下可能有结晶 ,请水浴加热使结晶完全溶解后再配制工作液  。

3.标准品复溶加样后,剩余部份请丢弃  。

4.底物请勿接触氧化剂和金属 。

5.加样时,请及时更换枪头 ,避免交叉污染。

6.严禁混用不同批号的试剂盒组份。

7.充分混匀对保证反应结果的准性很重要 ,在加液后请轻轻叩击边缘以保证混匀 。

8.室温反应,请严格控制在25~28℃。

9.洗涤过程是至关重要的  ,洗涤不充分会使精确度下降并导致结果误差较大。

10.试验中标准品和样本检测时建议作双复孔 。

11.加样过程中避免气泡的产生       。

12.血清和血浆标本的检测时,检测抗体的孵育时间应适当延长   。

 

检测前准备工作:

1.试剂盒自冰箱中取出后应置室温(25~28℃)平衡20分钟;每次检测后剩余试剂请及时于2~8℃保存。

2.将浓缩洗涤液用双蒸水或去离子水稀释(1份加19份水) 。

3.如有5X准品稀释液 ,请按所需量用双蒸水或去离子水稀释(1份加4水)  。

4.标准品: 按标签复溶体积加入标准品稀释液复溶使IL-12P70终浓度达到2500pg/ml ,室温反应 ,请严格控制在25~28℃  ,静置10~15分钟后轻轻混悬(建议抽吸几次)待彻底溶解,用标准品稀释液倍比梯度稀释后依次加入检测孔中   。(标准曲线取七个点 ,最高浓度为2500pg/ml,标准品稀释液直接加入作为0浓度.)

图片2.png 

洗涤方法:

自动洗板机或人工洗板:每孔洗涤液为300ul,注入与吸出间隔15-30秒。洗板5次  。最后一次洗板完成后将板倒扣着在厚吸水纸上用力拍干 。

 

实验过程需自备的材料:

1.不同规格的加样枪及相应的枪头  ;   

2.酶标仪  ;

3.自动洗板机    ;                     

4.去离子水或双蒸水 ;

 

操作步骤: 

1.通过计算并确定一次性实验所需的板条数,取出所需板条放置在框架内 ,暂时用不到板条请放回铝箔袋密封,保存于4℃    。

2.建议设置本底较正孔      ,即空白孔,设置方法为该孔只加TMB显色液和中止液。每次实验均需做标准品对照并画出标准曲线  。

3.分别将标本或不同浓度标准品(100ul/孔)加入相应孔中  ,用封板胶纸封住反应孔   ,室温(25~28℃)孵育120分钟。对于血清或血浆标本 ,请加入50 ul样本分析缓冲液后加50 ul标本  ,如稀释量大  ,请将样本与样本分析缓冲液等量加入   ,不足部分用标准品稀释液补充至100ul    。     

4.洗板5次     ,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

5.加入生物素化抗体工作液(100ul/) 。用封板胶纸封住反应孔,室温(25~28℃)孵育60分钟 。   

6.洗板5次 ,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

7.加入亲和素连接的HRP酶工作液(100ul/)  。用封板胶纸封住反应孔 ,避光室温(25~28℃)孵育20分钟  。

8.洗板5次 ,且最后一次置厚吸水纸上拍干  。

9.加入显色剂TMB100ul/孔  ,避光室温(25~28℃)孵育20分钟  。

10.加入终止液50ul/孔,混匀后即刻测量OD450值   。

 

结果判断:

1.复孔的值在20%的差异范围内结果才有效  ,复孔的值平均后可作为测量值 。

2.每个标准品或标本的OD值应减去本底校正孔的OD值  。

3.手工绘制标准曲线。以标准品浓度作横坐标  ,OD值作纵坐标 ,以平滑线连接各标准品的坐标点。通过标本的OD值可在标准曲线上查出其浓度 。

4.若标本OD值高于标准曲线上限 ,应适当稀释后重测 ,计算浓度时应乘以稀释倍数   。

典型数值和参考曲线

浓度pg/ml

典型OD1

典型OD2

OD平均值

0

0.1256

0.1071

0.1163

78.125

0.2528

0.234

0.2434

156.25

0.3057

0.3463

0.326

312.5

0.5621

0.5331

0.5476

625

0.9104

0.8384

0.8744

1250

1.4589

1.4183

1.4386

2500

2.233

2.0442

2.1386

小鼠IL-12P70参考标准曲线

图片1.png 

注意 :本图仅供参考  ,应以同次试验标准品所绘标准曲线计算标本含量  。

 

灵敏度   ,特异性和重复性:

1.灵敏度 :多次重复结果表明   ,最小检出量为11.2pg/ml    。

2.特异性 :与小鼠IL-12P70p35 、IL-12P70p40monomer、IL-12P70p40dimer  、IL-23 ,人IL-12P70   、IL-12P70p35   、 IL-12P70p40monomer和猫IL-12P70等没有交叉反应。

3.重复性 :板内     ,板间变异系数均<10%.

 

参考文献:

Gubler, U. et al. (1991) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88:4143.

Trinchieri, G. (1995) Annu. Rev. Immunol. 13:251.

Windhagen, A. et al. (1996) J. Immunol. 157:1127.

Mehrotra, P.T. et al. (1998) J. Immunol. 160:2637.

D’Andrea, et al. (1992) J. Exp. Med. 176:1387.

Schoenhaut, D.S. et al. (1992) J. Immunol. 148:3433.

Kato, T. et al. (1997) Cell. Immunol. 181:59.

Blotta, M.H. et al. (1997) J. Immunol. 158:5589.

Yawalkar, N. et al. (1996) J. Invest. Dermatol. 106:80.


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