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      小鼠白细胞介素5ELISA试剂盒Mouse IL-5 ELISA KIT
      货号:HM-04
      价格:¥2800.00/1760.00.00
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      小鼠白细胞介素5定量分析酶联免疫检测试剂盒

       

      本试剂盒仅供科研使用  。用于体外定量检测小鼠血清、血浆或细胞培养上清液中的IL-5 浓度。使用前请仔细阅读说明书并检查试剂组分是否完整。如有产品包装破损或质量投拆,请在收到货一个月之内联系尊龙凯时人生就是搏 。

       

      IL-5简介 :

      白介素5IL-5)属于α螺旋细胞因子家族 ,该家族包括IL-3,IL-5,GM-CSF等 ,与该家族其它因子不同的是 ,IL-5必须是二倍体才有生物活性作用。IL-5T细胞产生,小鼠的IL-5蛋白有133个氨基酸构成。

      IL-5能够强烈刺激分化,细胞活化和嗜酸性粒细胞的分化,同时IL-5还能刺激胸腺细胞产生细胞毒T细胞 。

       

      检测原理:

      本试剂盒采用双抗体夹心ELISA法检测样本中IL-5的浓度。IL-5捕获抗体已预包被于酶标板上,当加入标本或参考品时,其中的IL-5会与捕获抗体结合,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。当加入生物素化的抗小鼠IL-5抗体后,抗小鼠IL-5抗体与IL-5接合,形成夹心的免疫复合物,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。随后加入辣根过氧化物酶标记的亲合素 。生物素与亲合素特异性结合 ,亲合素连接的酶就会与夹心的免疫复合物连接起来;其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。最后加入显色剂 ,若样本中存在IL-5将会形成免疫复合物,辣根过氧化物酶会催化无色的显色剂

      氧化成蓝色物质 ,在加入终止液后呈黄色。通过酶标仪检测,读其450nm处的OD值,IL-5浓度与OD450值之间呈正比,通过参考品绘制标准曲线,对照未知样本中OD值 ,即可算出标本中IL-5浓度。

       

      小鼠IL-5定量分析酶联免疫检测试剂盒组成:

      组分

      规格(96T/48T)

      小鼠IL-5预包被板

      12条/6

      样本分析缓冲液

      5ml/3ml

      标准品稀释液

      10ml/5ml

      小鼠IL-5标准品

      2支/1支(冻干)

      小鼠IL-5生物素化抗体

      10ml/5ml

      亲和素连接的HRP酶

      10ml/5ml

      浓缩洗涤液 20×

      30ml/15ml

      TMB底物

      10ml/5ml

      中止液

      5ml/3ml

      封板胶纸

      3/2

      说明书

      1

      标本收集:

      1.标本的收集请按下列流程进行操作;

      A.细胞上清标本离心去除悬浮物后即可;

      B.血清标本应是自然凝固后,取上清,避免在冰箱中凝固血液 ;

      C.血浆标本 ,推荐用EDTA的方法收集

      D.若待测样本不能及时检测,标本收集后请分装,冻存于-20℃,避免反复冻融。

      2.血清标本不应添加任何防腐剂或抗凝剂;

      3.标本应清澈透明,检测前样本中如有悬浮物应通过离心去除。

      4.请勿使用溶血,高血脂或污染的标本检测 ,否则结果将不准确。

      注 :小鼠血清或血浆样本请用样本分析缓冲液做倍比稀释后再检测。

      注意事项:

      1.试剂盒请保存在28℃。

      2.浓缩洗涤液因在低温下可能有结晶 ,请水浴加热使结晶完全溶解后再配制工作液。

      3.标准品复溶加样后,剩余部份请丢弃。

      4.底物请勿接触氧化剂和金属。

      5.加样时,请及时更换枪头,避免交叉污染 。

      6.严禁混用不同批号的试剂盒组份。

      7.充分混匀对保证反应结果的准性很重要,在加液后请轻轻叩击边缘以保证混匀。

      8.室温反应,请严格控制在25~28℃。

      9.洗涤过程是至关重要的,洗涤不充分会使精确度下降并导致结果误差较大。

      10.试验中标准品和样本检测时建议作双复孔。

      11.加样过程中避免气泡的产生。

      12.血清和血浆标本的检测时 ,检测抗体的孵育时间应适当延长 。

       

      检测前准备工作:

      1.试剂盒自冰箱中取出后应置室温(25-28℃)平衡20分钟;每次检测后剩余试剂请及时于2~8℃保存。

      2.将浓缩洗涤液用双蒸水或去离子水稀释(1份加19份水)。

      3.如有5X准品稀释液,请按所需量用双蒸水或去离子水稀释(1份加4水)。

      4.标准品: 按标签复溶体积加入标准品稀释液复溶使IL-5终浓度达到1000pg/ml ,室温反应,请严格控制在25~28℃,静置10~15分钟后轻轻混悬(建议抽吸几次)待彻底溶解 ,用标准品稀释液倍比梯度稀释后依次加入检测孔中 。(标准曲线取七个点,最高浓度为1000pg/ml,标准品稀释液直接加入作为0浓度.)

      图片2.png 

      洗涤方法:

      自动洗板机或人工洗板:每孔洗涤液为300ul,注入与吸出间隔15-30秒。洗板5次。最后一次洗板完成后将板倒扣着在厚吸水纸上用力拍干。

       

      实验过程需自备的材料 :

      1.不同规格的加样枪及相应的枪头;   

      2.酶标仪;

      3.自动洗板机;                     

      4.去离子水或双蒸水;

       

      操作步骤:

      1.通过计算并确定一次性实验所需的板条数,取出所需板条放置在框架内,暂时用不到板条请放回铝箔袋密封 ,保存于4℃。

      2.建议设置本底较正孔 ,即空白孔,设置方法为该孔只加TMB显色液和中止液 。每次实验均需做标准品对照并画出标准曲线 。

      3.分别将标本或不同浓度标准品(100ul/孔)加入相应孔中,用封板胶纸封住反应孔 ,室温(25-28℃)孵育120分钟。对于血清或血浆标本,请加入50 ul样本分析缓冲液后加50 ul标本,如稀释量大,请将样本与样本分析缓冲液等量加入,不足部分用标准品稀释液补充至100ul。      

      4.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

      5.加入生物素化抗体工作液(100ul/)。用封板胶纸封住反应孔,室温(25-28℃)孵育60分钟 。    

      6.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干 。

      7.加入亲和素连接的HRP酶工作液(100ul/)。用封板胶纸封住反应孔,避光室温(25-28℃)孵育20分钟。

      8.洗板5次 ,且最后一次置厚吸水纸上拍干 。

      9.加入显色剂TMB100ul/孔 ,避光室温(25-28℃)孵育20分钟。

      10.加入中止液50ul/孔,混匀后即刻测量OD450值。

       

      结果判断:

      1.复孔的值在20%的差异范围内结果才有效,复孔的值平均后可作为测量值。

      2.每个标准品或标本的OD值应减去本底校正孔的OD值 。

      3.手工绘制标准曲线。以标准品浓度作横坐标,OD值作纵坐标,以平滑线连接各标准品的坐标点 。通过标本的OD值可在标准曲线上查出其浓度。

      4.若标本OD值高于标准曲线上限,应适当稀释后重测,计算浓度时应乘以稀释倍数。

      典型数值和参考曲线

      浓度pg/ml

      典型OD1

      典型OD2

      OD平均值

      0

      0.0712

      0.0868

      0.079

      31.25

      0.1799

      0.2069

      0.1934

      62.5

      0.3753

      0.3989

      0.3871

      125

      0.5498

      0.573

      0.5614

      250

      0.9057

      0.9613

      0.9335

      500

      1.4381

      1.4703

      1.4542

      1000

      2.0046

      2.2534

      2.129

      小鼠IL-5参考标准曲线

      图片1.png 

       

      注意 :本图仅供参考,应以同次试验标准品所绘标准曲线计算标本含量 。

       

      灵敏度,特异性和重复性:

      1.灵敏度:多次重复结果表明,最小检出量为4.8pg/ml。

      2.特异性 :与小鼠GM-CSF,IFN-γ,IL-1α,IL-1β, IL-1ra, IL-2, IL-3,IL-4及人的IL-5都没有交叉反应。

      3.重复性:板内,板间变异系数均<10%.

       

      参考文献:

      1. Takatsu, K. (1998) Cytokine and Growth Factor Reviews 9:25.

      2. Sanderson, C.J. (1992) Blood 79:3101.

      3. Lee, N.A. and J.J. Lee (1997) Amer. J. Respir. Cell Mol. Biol. 16:497.

      4. Takaki S. et al. (1990) EMBO J. 9:4367.


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